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一、操作前准备
1、清洗与消毒
拆解清洗：将反应器各部件(罐体、管路、电极等)拆解后，分别用洗洁精和1%氢氧化钠溶液浸泡清洗，纯化水冲洗10次以上。
消毒处理：清洗后的部件用消毒液(按比例稀释)浸泡30分钟，晾干后避免直接接触表面。
传感器维护：pH电极浸泡于饱和KCl溶液，溶氧(DO)电极更换电解液并排除气泡，极化6小时以上。
2、罐体装配
密封安装：将罐盖与罐体底座对齐，用内六角工具对角均匀拧紧螺丝，确保密封性。
管路连接：通过硅胶管或快接头连接补料瓶、排气瓶、取样瓶等，电极插入对应接口后手动拧紧。
二、上罐操作
1、细胞接种
将预培养的细胞悬液混合均匀后计数，转移至接种瓶并与反应器进液管无菌连接。
使用压缩空气将细胞悬液压入反应器，避免细胞沉降结团。
2、参数初始化
环境设置：温度设为37℃(哺乳动物细胞)，溶氧40%，pH 7.0左右，通过控制面板启动自动调节。
补料与通气：蠕动泵控制补液速率，进气系统调节氧气压力至0.1MPa，确保溶氧稳定。
三、培养过程控制
1、动态监测
传感器联动：实时监测温度、pH、DO等参数，控制器自动调节搅拌速度(100–300 rpm)和补料速率。
在线取样：每24小时取样检测细胞密度和代谢状态，取样后管路末端浸入75%酒精防止污染。
2、污染防控
操作全程保持无菌环境，使用火焰消毒连接口，避免外界杂质进入。
四、下罐操作与维护
1、终止培养
关闭自动控制�？�，通过压缩空气将培养液排入废液桶，断开电极连接。
2、清洗与存储
拆卸罐体组件，用纯化水冲洗后以0.1M NaOH溶液浸泡过夜，彻底去除生物残留。
干燥后存放于通风处，电极单独存放于专用包装盒。
五、关键注意事项
1、密封性检查：装配后需进行压力测试，避免培养过程中泄漏。
2、参数校准：每次使用前需校正pH和DO电极，确保数据准确性。
3、规模放大：遵循恒定的通气体积与液体体积比(VVM)，保障溶氧传递效率一致。
通过以上步骤，不锈钢细胞生物反应器可实现从实验室到中试规模的稳定细胞培养，适用于抗体生产、疫苗开发等高精度生物工艺。
